Virusul mozaicului castravetilor - Cucumber mosaic virus, CMV, Cucumovirus, Bromoviridae, (Ref. Pop, 2009, TVV, III, 243). Sinonime: Cucumber virus 1 Johnson, Cucumis virus 1 (Doolittle) Smith, Marmor cucumeris Holmes, Banana
infectious chlorosis virus, Coleus mosaic virus, Cowpea banding mosaic virus,
Cowpea ringspot virus, Lily ringspot virus, Pea top necrosis virus, Pea western
ringspot virus, Peanut yellow mosaic virus, Southern celery mosaic virus,
Soybean stunt virus, Spinach blight virus, Tomato fern leaf virus. Tulpini:
Virusul este deosebit de variabil, fiind considerat de unii autori o
quasispecie (Lin si Falck, 2003, Phytopathology 93, 100)
prezentand numeroase forme si tulpini, care difera intre
ele biologic, fiziohimic si serologic, dintre care mai importante sunt
tulpinile Tipica G, Galbena P6-Price 1934, P5-Price 1934, Y-Price
1934, M, S, Q, LsS, C, MV-N, WL. Pe baza structurilor
antigenice, izolatele RToS si, respecti, DTL (Devergne si Cardin,
1973, Ann. Phytopathol 5, 409). De asemenea, izolatele care produc
simptome de mozaic la germoplasma de mozaic galben PI 161375 se numesc "de tip
Song", iar care nu infecteaza aceasta germoplasma apartin
tipurilor "comune". A fost descris prima data la Cucumis sativus, in SUA (Doolittle,
1916, Phytopathology 6, 145; Jagger,
1916, Phytopathology 6, 148; Price, 1934,
Phytopathology 24, 743). În prezent, este raspandit
in toata lumea, fiind foarte frecvent la cucurbitaceele cultivate
in camp sere si solarii, in Turcia, din 165 probe
analizate, 53,9 % erau infectate cu Watermelon
mosaic virus, 38,8 % cu Zucchini
yellow mosaic virus si 20,6 % cu Cucumber
mosaic virus (Sevik, 2003,
Plant Dis. 87, 341). Virusul prezinta importanta economica
deosebita, producand pagube foarte mari,
mai ales la speciile de cucurbitacee susceptibile, ardei si tomate,
cultivate in spatii protejate si camp, efectele patogene
fiind si mai mari in cazul infectiilor duble sau multiple cu
alte irusuri ale uurbitaceelor. În tara
noastra, este frecvent la speciile de cucurbitacee, precum si la
ardei, tomate, tutun si alte specii cultivate in camp si
spatii protejate (Pop
si Docea, 1961 Gradina,
via si livada, 8, 56), producand, adesea, pierderi insemnate
de productie. CMV produce boli grave la numeroase culturi (Kaper si Waterworth, 1981).
La castraveti (Cucumis sativus), pe suprafata
frunzelor tinere apar pete si zone clorotice
raspandite e toata suprafata limbului. La culturile
ciclului I din sere, spre primavara apare un
fenomen de ofilire generala a plantelor infectate. În aceasta
faza, pe suprafata frunctelor verzi apar numeroase pete clorotice, iar intr-un stadiu mai avansat
fructele se ingalbenesc prezentand pete de culoare mai
inchisa pe fond galben. La pepenele galben (Cucumis melo), frunza cea mai tanara a plantelor
infectate manifesta, la inceput, numeroase pete
mici de culoare verde-deschisa sau galbuie, pe frunza urmatoare
observandu-se o decolorare evidenta a retelei nervurilor.
În continuare, pe suprafata frunzelor poate apare un
mozaic bine exprimat, cu pete relativ mari de culoare galbuie
alternand cu zone verzi. Pe fructele inca verzi,
se poate observa o marmorare discreta, caracterizata prin zone
clorotice cu reflexe alburii, intrepatrunse de insule mici de
culoare verde. Împreuna cu Watermelon mosaic virus, VMC produce la pepenele galben un mozaic grav, caracterizat prin decolorari
internervuriene galbui, tesuturi verzi asociate cu unele
portiuni ale nervurilor si pete verzi evidente pe fructele mature.
CMV impreuna cu Zucchini
yellow mosaic virus produc franarea cresterii tulpinii si a
frunzelor si pete mari clorotice pe frunzele
apicale. La dovlecel (Cucurbita pepo),
pe frunzele tinere usor vestejite, apar cateva pete mici, stelate, de culoare galbuie, care
evolueaza in mozaic grav, cu pete mari, neregulate, de culoare
galbuie, insotite de deformarea limbului. Frunzele tinere recent
invadate sunt zbarcite si ingalbenite, initial
observandu-se, uneori, o marmorare fina, formata din numeroase pete
mici clorotice aparute la baza limbului. Fructele plantelor atacate sunt
marmorate, epiderma lor fiind, in cea mai mare parte, clorotica, pe
acest fond observandu-se unele pete mici de
culoare verde, usor adancite in tesut, ceea ce da
fructelor o aparenta punctata. În cazul
dovleacului comestibil (Cucurbita maxima),
frunzele tinere sunt puternic incretite si manifesta
simptome evidente de mozaic. Portiunile verzi sunt bombate spre
fata superioara, iar cele galbene-verzui sunt mari
si confluente, spre deosebire de decolorarile de dimensiuni reduse de
la castraveti. În conditii de
temperatura scazuta, pot apare fenomene de ofilire. Pepenele verde (Citrullus
lanatus) prezinta infectie latenta sau reactie soc
necrotica. Pe langa cucurbitacee, VMC produce o
viroza caracteristica la sfecla de zahar (Pop, 1959 Com. Acad. R.P.R. 9, 445),
infectii grave la tutun (Pop,
1967, Virozele plantelor agricole si combaterea lor. Ed. Agro-Silvica
Bucuresti, 264 pp.), piticire si deformarea frunzelor si,
in prezenta satelitului CARNA-5, o boala necrotica
letala la tomate, piticirea si indesirea ardeiului (Pop si Docea, 1961, l.c.), patarea si
ingalbenirea spanacului si boli importante la vinete (Solanum melongena), salata (Lactuca sativa), anghinarie (Cynara scolymus), sparanghel (Asparagus officinalis), cicoare (Cicharium spp.), varza (Brassica oleracea), conopida (B. oleracea var. botrytis), alte specii si forme de Brassica, ridiche (Raphnus
sativus), usturoi (Allium sativum),
morcov (Dancus carota),
patrunjel (Petroselinum crissspum),
marar (Anethum graveolens), telina (Apium graveolens), pastarnac
(Pastinaca sativa), revent (Rheum officinalis), fasole (Phaseolus vulgaris), fasolita
(Vigna spp.) mazare (Pisum
sativum), naut (Cicer arietinum),
bob (Vicia faba), lupin (Lupinus spp.), lucerna (Medicago sativa), lufa (Luffa cylindrica), porumb (Zea mays), canepa (Cannabis sativa), menta (Mentha spp.), sofranel (Carthamus tinctorius), coriandru (Coriandrum sativum), numeroase plante
floricole (dalii, garoafe, gladiole, petunii, muscata, primula,
ochiul boului, pansele), arbusti ornamentali (Aristolachia spp., Berberis spp., Buddleja spp., Caryopteris spp., Centaurea spp., Chinatus spp., Clematitis spp., Cornus spp., Daphne spp., Scallonia spp., Euonymus spp., Forsythia spp., Hydrangea spp., Iasminum spp., Leycesteria spp., Ligustrum spp., Lonicera spp., Lycium spp., Maclura spp., Magnolia spp., Nandina spp., Nerium spp., Paulownia spp., Phyladelphus spp., Rhamnus spp., Ribes spp., Romneya spp., Sambucus spp., Solanum spp., Viburnum spp.), arbusti fructiferi (coacaz, zmeur ) si
pomi fructiferi (cires, piersic, prun, visin), mai recent fiind
izolat de la arbustul Teucrium fruticans
in Franta si Italia, in statul Ohio (S.U.A.) de la Allium sativum, Loberia erinus si Alliaria officinalis, la prima specie
fiind prezent si satelitul CARNA-5, in Florida de la Adenium
obesum, in statul Illinois de la buruienile Solanum ptycanthum si Physalis
spp., iar, in Italia, de la planta ornamentala Polygala myrtifolia si Cinaria
scolynus. Dintre speciile suscepetibile, cea mai mare importanta
epidemiologica au Alliaria
officinalis, Ajuga reptans, Arctium lappa, Asclepias curassavica, Capsella
bursa-pastaris, Humulus scadens, Lycium hamilifolium, L. chinense, Physalis spp., Phytolacca americana, Senecio vulgaris, Smyrnium obusatrum,
Steallaria media si Urtica urens. Prin inoculari
artificiale, virusul a fost transmis la peste 200 specii, apartinand
la 40 familii botanice dupa Edwardson
si Christie, CMV are un cerc
experimental de plante gazda extrem de mare, cuprinzand peste 1000
de specii din 100 familii dicotiledonate si monocotiledonate. Virusul produce leziuni locale
clorotice la C. amaranticolor si C. quinoa, mozaic sistemic la Cucumis sativus, leziuni locale necrotice la V. unguiculata si simptome dependente de tulpina virusului la L.
esculentum, Nicotiana x edwardsonii, N. glutinosa si N. tabacum
si leziuni locale brune-rosietice de 2-3 mm diametru dupa 14
zile de la inoculare la Solanum bahamense
(Adkins si Rosskopf,
2002, Plant Dis. 86, 1310). Virionii se gasesc in citoplasma celulelor infectate din
toate partile plantelor, dar nu in cloroplaste si
mitocondrii. În citoplasma, se
formeaza, de asemenea, incluziuni cristaline, adesea romboidale,
hexagonale, aproape sferice sau sub forma de structuri solide
gaunoase care contin virioni. Incluziunile se gasesc, mai
ales, in celulele epidermei si mezofilului frunzelor, fiind
usor de identificat in fasiile prelevate de pe nervurile
fetei inferioare a frunzelor colorate cu 0,1 % azur A. Experimental,
virusul poate fi transmis prin inoculare de suc si cel putin zece
specii de Cuscuta, in care
acesta se si multiplica. În natura, este transmis,
nepersistent, prin peste 60 specii de afide, eficacitatea transmiterii variind
in functia de specia de afide, tulpina virusului si plantele
gazda, principalii vectori fiind Acyrthosiphon
pisum, Aphis craccae, A. fabae, A. frangulae, A. gossypii, A. nasturtii,
Aulacorthum circumflexus, A. solani, Brachycaudus helichrysi, Brevicoryne
brassicae, Hyperomyzus lactucae, Macrosiphum euphorbiae, Myzus ascalonicus si M. persicae. Dupa Edwardson
si Christie (1986), peste 86
specii de afide au fost raportate ca vectori ai acestui virus. Virusul poate fi
achizitionat si inoculat de toate stadiile insectelor in 5-10
secunde, capacitatea de transmitere a acestora scade
dupa cca. 2 minute si este complet
pierduta dupa aproximativ doua ore.
Transmiterea prin
samanta, in proportii variabile, a fost
raportata la 19 specii, fiind pusa in evidenta la Vigna sesquipedalis, V. sinensis, Cucumis melo,
Echinoscystis lobata si, in
proportie de 0,5-30 %, la Stellaria
media, virusul fiind localizat in embrioni unde se
pastreaza infectios cel putin 18 luni. La castraveti,
transmiterea prin samanta este
rara, plantutele infectate recunoscandu-se de timpuriu,
prin necrozarea si deformarea cotiledoanelor. Circuitul virusului in
natura este bine asigurat, datorita
numarului mare de plante gazda multianuale, transmiterii prin
samanta si numeroaselor specii de afide vectoare. Virusul apare in toate regiunile de cultura a
cucurbitaceelor, unele tulpini fiind cantonate in zone cu climate
temperate, mediteraniene sau tropicale, iar altele se gasesc in
regiunile nordice cu temperaturi scazute. Plantele de cultura
si buruienile susceptibile, perene, anuale de toamna, sau anuale
provenite din seminte infectate, sunt primele surse de infectie
pentru noile culturi, unele dintre ele fiind si gazde de iernare pentru
vectorii care initiaza epidemiile. În functie de
tulpina si plante gazda, sucul extras din frunze contine putini
sau multi virioni, inactivarea termica are loc la 55-70°C,
longevitatea in vitro este de 1-10
zile, iar dilutia limita 10-3-10-6,
iar virusul este distrus prin uscarea tesuturilor la temperatura
camerei. Deoarece virionii sunt
instabili, este necesara fixarea lor cu aldehide
inainte de contrastarea cu acid fosfatungstic pH 3-4. Fara
fixare, rezultate bune se pot obtine la contrastarea cu acetat de uranil
pH 4 (Francki
s.a., 1966, Virology 28, 729). Virusul poate fi
purificat prin metoda lui Peden
si Symons (1973, Virology
53, 487). Are proprietati antigenice slabe, ele putand
fi imbunatatite prin fixarea particulelor cu formaldehida. Deoarece CMV precipita in
prezenta serului fiziologic sau prin expunere la incalzire,
testele de difuzie in gel vor fi efectuate in tampoane cu
molaritate scazuta sau in apa. La
utilizarea virusului fixat, se obtine o singura banda de
precipitare. Virionii sunt izometrici, de 28-30 nm in diametru,
avand profil rotund si un gol central de c. 12 nm in diametru,
capsida fiind formata din 180 subunitati proteice grupate
in pentamere si hexamere, numarul de triunghiulatie fiind
T=3. Cu toate ca au acelasi coeficient de
sedimentare, exista trei tipuri de particule, unele continand
ARN-1, altele ARN-2 sau ARN-3. Preparatele purificate se
sedimenteaza sub forma unui singur component, punctul izoelectric al
tulpinii Q este pH 5 , iar genomul consta din
trei parti de ARN monocatenar, linear. În virioni, se mai
gasesc ARNm al proteinei capsidale (ARN-4) si in unele tulpini, un ARN
satelit, denumit CARNA-5 (Kaper
si West, 1972, Prep. Biochem. 2, 251), capsida virala est
formata dintr-o singura proteina capsidala, iar genomul
codifica trei proteine nestructurale.
La combaterea VMC se
utilizeaza un complex de masuri, cele privind eliminarea si
evitarea surselor de infectie constand in distrugerea
buruienilor gazda, utilizarea de samanta si
material de inmultire vegetativa libere de virus, izolarea
culturilor susceptibile de cele infectate, bararea mecanica a
patrunderii afidelor in sere si solarii si eliminarea
primelor plante infectate din cultura, obtinerea semintelor
si materialelor de inmultire vegetativa
realizandu-se in cadrul unor sisteme speciale, utilizand
termoterapia si culturile meristematice. Reducerea infectiilor care
au loc prin afide se realizeaza prin combaterea chimica a acestora, utilizarea preparatelor repelente, mulcirea
solului cu diferite materiale, stropirea plantelor cu uleiuri si
inconjurarea culturilor sensibile cu specii de plante mai inalte. Obtinerea si cultivarea soiurilor rezistente
prezinta importanta deosebita. Rezistenta
castravetilor la VMC este controlata de trei
gene cu transmitere intermediara in descendenta, prezente
in soiul olandez Hokus si in alte soiuri. La Cucumis melo surse de
rezistenta se gasesc in linia PI 161375 si la alte
germoplasme soiul de ardei (Capsicum
annuum) Parenial poseda una sau mai multe gene de
rezistenta/toleranta, Capsicum
frutescens BG 2814-6 are o rezistenta incomplet penetranta
controlata de cel putin doua gene majore recesive, iar soiul de
spanac Virginia savoy prezinta o gena de rezistenta
dominanta. S-au obtinut rezultate si sunt in curs de
desfasurare lucrari privind crearea germoplasmelor de
castraveti, tomate, ardei, vinete, spanac si tutun rezistente la VMC
prin transformari genetice cu genele virale ale proteinei capsidale
si replicazei sau secvente ale ARN sateliti. Prin
tratamente cu preparate rizobacteriene, s-au obtinut o marire
semnificativa a cresterii plantelor de tomate si protejarea lor
la infectiile cu VMC.